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當(dāng)前位置:首頁(yè)   >  產(chǎn)品中心  >  蛋白質(zhì)生物學(xué)  /  蛋白提取和裂解  /  BB-36991植物囊泡提取試劑盒-50T

植物囊泡提取試劑盒-50T

簡(jiǎn)要描述:總蛋白提取試劑盒含有的配方能夠有效溶解細(xì)胞膜組份,包括細(xì)胞質(zhì)膜、核膜和各種細(xì)胞器膜。本試劑盒含有的蛋白酶抑制劑混合物,阻止了蛋白酶對(duì)蛋白的降解,為提取高純度的蛋白提供了保證。

  • 產(chǎn)品型號(hào):BB-36991
  • 廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家
  • 更新時(shí)間:2025-09-24
  • 訪  問(wèn)  量:177

詳細(xì)介紹

蛋白提取試劑盒保存溫度
2-8℃

總蛋白提取試劑盒注意事項(xiàng)
1.蛋白酶抑制劑未開蓋使用前也可以2-8℃儲(chǔ)存。開蓋使用后-20℃儲(chǔ)存。
2.蛋白酶抑制劑在2-8℃低溫時(shí)是固體狀態(tài),從冰箱取出后恢復(fù)至室溫或37℃短時(shí)間水浴,變成液體狀態(tài)后離心至管底部再開蓋。
3.試劑拆封后請(qǐng)盡快使用完!    

有效期

一年

檢測(cè)方法
WB,IP,co-IP,ELISA,EMSA等
適用樣本
動(dòng)物細(xì)胞/組織

總蛋白提取試劑盒產(chǎn)品特點(diǎn)
1.使用方便,從細(xì)胞,組織中提取蛋白不需經(jīng)過(guò)研磨、反復(fù)凍融、超聲破碎等前處理。
2.提取過(guò)程簡(jiǎn)單方便,將蛋白提取的時(shí)間縮短至30分鐘-1小時(shí)。
3.含蛋白穩(wěn)定劑,提取的蛋白穩(wěn)定。
4.紫外檢測(cè)蛋白濃度時(shí),背景干擾低。
5.總蛋白提取液含多種有效成分,可以充分釋放胞漿蛋白、核蛋白和膜蛋白,又可結(jié)合釋出的蛋白防止沉淀。
6.蛋白酶抑制劑抑制了蛋白的降解,蛋白酶抑制劑配方優(yōu)化。蛋白酶抑制劑混合物包含6種獨(dú)立的蛋白酶抑制劑AEBSF、Aprotinin、Leupeptin、Pepstatin A、Bestatin、E-64,每一種抑制劑可特異性抑制某一種或幾種蛋白酶活性。該混合物優(yōu)化的組成使其可以抑制幾乎所有重要的蛋白酶活性,包括蛋白酶、半蛋白酶、天冬氨酸蛋白酶、丙氨酰-氨基肽酶等。

產(chǎn)品應(yīng)用
WB,IP,co-IP,ELISA,EMSA等
儀器準(zhǔn)備
1.離心機(jī)
2.振蕩器
3.勻漿機(jī)/勻漿器
4.渦旋混勻器
5.移液器
6.冰箱
7.冰盒
試劑準(zhǔn)備
1.PBS緩沖液
2.蛋白定量試劑盒
耗材準(zhǔn)備                        
1.離心管
2.吸頭
3.一次性手套
使用注意事項(xiàng)
?旋帽離心管裝的試劑在開蓋前請(qǐng)短暫離心,將蓋內(nèi)壁上的液體甩至管底,避免開蓋時(shí)液體灑落。
?蛋白酶抑制劑在2-8℃時(shí)是固體狀態(tài),從冰箱取出后恢復(fù)至室溫或37℃短時(shí)間水浴,變成液體狀態(tài)后離心至管底部再開蓋。
?實(shí)驗(yàn)過(guò)程中的所有試劑須預(yù)冷;所有器具須放-20℃冰箱預(yù)冷。整個(gè)過(guò)程須保持樣品處于低溫。
?蛋白酶抑制劑儲(chǔ)存期間溶液如果出現(xiàn)沉淀,不影響使用,溶解后正常使用。
?如果試劑盒不能短時(shí)間內(nèi)用完,蛋白酶抑制劑混合物不可以一次全部加入提取液。
?可以根據(jù)自己實(shí)驗(yàn)需要加入其它蛋白酶抑制劑單品。
?下游實(shí)驗(yàn)如果是進(jìn)行特定蛋白酶或磷酸酶的酶活性檢測(cè),提取液可以不加蛋白酶抑制劑或磷酸酶抑制劑,注意提取過(guò)程保持低溫操作,縮短離心時(shí)間。
?Western Blot實(shí)驗(yàn)內(nèi)參可以選用beta-actin、GAPDH、Tubulin。
離心機(jī)轉(zhuǎn)速有相對(duì)離心力(RCF,×g)和每分鐘轉(zhuǎn)速(RPM,r/min)兩種表示方式,有些離心機(jī)設(shè)置有RPM和×g顯示切換,但部分離心機(jī)沒有自動(dòng)切換功能。需要用下面的公式進(jìn)行換算:g=r×1.118×10-5×rpm2 (r 為有效離心半徑,即從離心機(jī)軸心到離心收集管底部中心位置的長(zhǎng)度,單位為厘米) 例如: 轉(zhuǎn)速為3000rpm,有效離心半徑為10 cm,則相對(duì)離心力(RCF,×g)為=10×1.118×10-5×30002=1006.2(×g)。
使用方法
細(xì)胞樣本總蛋白提取:
懸浮細(xì)胞蛋白提?。?br/>1. 提取液準(zhǔn)備:
每500 μl冷的總蛋白提取液中加入2 μl蛋白酶抑制劑混合物和2 μl磷酸酶抑制劑混合物,混勻后置冰上備用。
2. 取5×106個(gè)細(xì)胞,在4℃,2500×g條件下離心5分鐘,小心吸取培養(yǎng)基,盡可能吸干,收集細(xì)胞。
3. 用冷PBS洗滌細(xì)胞兩次,每次洗滌后盡可能吸干上清。
4. 每5×106 -1×107個(gè)細(xì)胞(大約50 mg細(xì)胞/50 μl細(xì)胞沉淀體積)中加入500 μl冷的總蛋白提取液,吹打混勻后,在4℃條件下振蕩20-30分鐘,至細(xì)胞充分裂解,無(wú)明顯細(xì)胞沉淀。
5. 在4℃,12000×g條件下離心15分鐘。
6. 將上清吸入另一預(yù)冷的干凈離心管,即可得到總蛋白。
7. 將上述蛋白提取物定量后分裝于-80℃冰箱保存?zhèn)溆没蛑苯佑糜谙掠螌?shí)驗(yàn)。

貼壁細(xì)胞蛋白提取:
1. 提取液準(zhǔn)備:
每500 μl冷的總蛋白提取液中加入2 μl蛋白酶抑制劑混合物和2 μl磷酸酶抑制劑混合物,混勻后置冰上備用。
2. 小心吸取貼壁細(xì)胞的培養(yǎng)液。
3. 用冷PBS洗滌細(xì)胞兩次,每次洗滌后盡可能吸干PBS。
4. 加入適量冷的總蛋白提取液,振蕩15-30分鐘,至細(xì)胞充分裂解,用細(xì)胞刮刀刮一遍,將裂解液吸入另一干凈離心管。
5. 在4℃,12000×g條件下離心15分鐘。
6. 將上清吸入另一預(yù)冷的干凈離心管,即得到總蛋白。
7. 將上述蛋白提取物定量后分裝于-80℃冰箱保存?zhèn)溆没蛑苯佑糜谙掠螌?shí)驗(yàn)。
組織樣本總蛋白提?。?br/>1. 提取液準(zhǔn)備:
每500 μl冷的總蛋白提取液中加入2 μl蛋白酶抑制劑混合物和2 μl磷酸酶抑制劑混合物,混勻后置冰上備用。
2. 取50-100 mg組織樣本,用PBS洗干凈,然后用刀盡可能剪碎,加入500 μl總蛋白提取液,用組織勻漿器/勻漿機(jī)勻漿至無(wú)明顯肉眼可見固體。
3. 將組織勻漿吸入一預(yù)冷的干凈離心管中,在4℃條件下振蕩10-20分鐘。
4. 在4℃,10000-14000×g條件下離心15分鐘。
5. 將上清吸入另一預(yù)冷的干凈離心管,即得到總蛋白。
6. 將上述蛋白提取物定量后分裝于-80℃冰箱保存?zhèn)溆没蛑苯佑糜谙掠螌?shí)驗(yàn)。

常見問(wèn)題分析
1.蛋白濃度低?
處理部分組織樣本時(shí)可能沒有裂解,導(dǎo)致蛋白濃度低。只要適當(dāng)延長(zhǎng)試劑A的處理時(shí)間即可。在持續(xù)振蕩的條件下處理,沒有振蕩器也可間隔幾分鐘用吸頭吹打混勻。

2.細(xì)胞裂解速度慢?
為了充分保證提取得到的蛋白的活性,提取液采用的保護(hù)蛋白的配方,裂解能力溫和,下游應(yīng)用范圍廣。適當(dāng)延長(zhǎng)裂解的時(shí)間即可。

3.用什么方法定量蛋白?
建議用BCA法。不適合用Bradford法,因?yàn)樵噭〢中含有干擾Bradford法的組份,導(dǎo)致定量不準(zhǔn)。如果已經(jīng)進(jìn)行過(guò)透析處理或者用脫鹽柱改換過(guò)緩沖體系,則可以用Bradford法定量。

4.提取時(shí)出現(xiàn)膠狀沉淀?
蛋白提取液處理產(chǎn)物中有時(shí)會(huì)出現(xiàn)少量透明膠狀物,屬正?,F(xiàn)象。該透明膠狀物為含有基因組DNA等的復(fù)合物。不檢測(cè)和基因組DNA結(jié)合特別緊密的特定蛋白的情況下,可以直接離心取上清進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)即可;如果需要檢測(cè)和基因組結(jié)合特別緊密的蛋白,則可以通過(guò)超聲處理,300w/10秒間隔10秒,超聲3分鐘,隨后離心取上清用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。檢測(cè)一些常見的轉(zhuǎn)錄因子,例如NF-kappaB、p53等時(shí),不必進(jìn)行超聲處理。

5.提取的蛋白具有活性嗎?
本試劑盒不含有離子型去垢劑組份,不破壞蛋白的結(jié)構(gòu),沒有對(duì)蛋白質(zhì)之間原有的相互作用的破壞,蛋白均保持其天然構(gòu)象和活性。
參考文獻(xiàn)
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Multiple integrin ligands provide a highly adhesive and osteoinductive surface that improves selective cell retention technology
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Biomaterials      2018       (IF=10.317)

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Sci Rep.      2017       (IF=5.228)

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British Journal of Pharmacology      2015       (IF=5.259)

6.Pin Huan et al.
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Journal of Proteomics      2012       (IF=5.074)



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